Lịch công tác tuần 07/04-12/04
Author: tcnhat
-
Danh sách các ứng viên đã trúng tuyển vào PTN Nghiên cứu và Ứng dụng Tế bào gốc
THÔNG BÁO
Danh sách các ứng viên đã trúng tuyển vào PTN Nghiên cứu và Ứng dụng Tế bào gốc
STT
Họ và tên
NTNS
1
Trịnh Vạn Ngữ
2/12/1990
2
Trương Châu Nhật
12/7/1991
3
Lê Minh Phong
4/11/1991
Ngày bắt đầu làm việc: 08h00, 3/3/2014
Địa điểm: PTN NC&UD Tế bào gốc, tầng lửng nhà E-Trường ĐH Khoa học tự nhiên, 227 Nguyễn Văn Cừ F.4 Q.5 TP. HCM
TM. Lãnh đạo PTN Tế bào gốc
Phó trưởng PTN
Phạm Văn Phúc -
Good manufacturing practice-compliant isolation and culture of human umbilical cord blood-derived…
Good manufacturing practice-compliant isolation and culture of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells
Phuc Van Pham, Ngoc Bich Vu, Vuong Minh Pham, Nhung Hai Truong, Truc Le-Buu Pham, Loan Thi-Tung Dang, Tam Thanh Nguyen, Anh Nguyen-Tu Bui and Ngoc Kim Phan
Journal of Translational Medicine 2014, 12:56 doi:10.1186/1479-5876-12-56
Published: 24 February 2014
Abstract (provisional)
Background
Mesenchymal stem cells (MSCs) are an attractive source of stem cells for clinical applications. These cells exhibit a multilineage differentiation potential and strong capacity for immune modulation. Thus, MSCs are widely used in cell therapy, tissue engineering, and immunotherapy. Because of important advantages, umbilical cord blood-derived MSCs (UCB-MSCs) have attracted interest for some time. However, the applications of UCB-MSCs are limited by the small number of recoverable UCB-MSCs and fetal bovine serum (FBS)-dependent expansion methods. Hence, this study aimed to establish a xenogenic and allogeneic supplement-free expansion protocol.
Methods
UCB was collected to prepare activated platelet-rich plasma (aPRP) and mononuclear cells (MNCs). aPRP was applied as a supplement in Iscove modified Dulbecco medium (IMDM) together with antibiotics. MNCs were cultured in complete IMDM with four concentrations of aPRP (2, 5, 7, or 10%) or 10% FBS as the control. The efficiency of the protocols was evaluated in terms of the number of adherent cells and their expansion, the percentage of successfully isolated cells in the primary culture, surface marker expression, and in vitro differentiation potential following expansion.
Results
The results showed that primary cultures with complete medium containing 10% aPRP exhibited the highest success, whereas expansion in complete medium containing 5% aPRP was suitable. UCB-MSCs isolated using this protocol maintained their immunophenotypes, multilineage differentiation potential, and did not form tumors when injected at a high dose into athymic nude mice.
Conclusion
This technique provides a method to obtain UCB-MSCs compliant with good manufacturing practices for clinical application.
http://www.translational-medicine.com/content/12/1/56/abstract
-
Lịch công tác tuần 24/0-01/3
Lịch công tác tuần 24/0-01/3
Ngày
Giờ
Nội dung
Địa điểm
Thành phần
Thứ 2
24/02
8h-11h
Họp giao ban lab
Open lab
Toàn thể thành viên PTN
15h-17h
Họp nhóm Gan
Thư viện
Nhóm gan
Thứ 3
25/02
14h-16h
Họp nhóm Thần kinh
Thư viện
Nhóm thần kinh
Thứ 4
26/02
9h-10h
Công tác chuẩn bị quay phim
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, T.Sinh
9h-11h
Họp nhóm tiểu đường 2
Thư viện
Nhóm tiểu đường 2
13h-14h
Họp nhóm tiểu đường 1
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, nhóm tiểu đường 1,
14h-15h
Họp nhóm tiểu đường 2
Thư viện
Nhóm tiểu đường 2, sinh viên
Thứ 5
27/02
14h-15h30
Quay phim (trường)
SCL
P.V.Phúc, T.Sinh
Thứ 6
28/02
13h-15h30
Nghiệm thu đề tài cấp sở
P.V.Phúc
Thứ 7
01/03
-
Thông báo v/v phỏng vấn tuyển nhân sự
THÔNG BÁOCác ứng viên đã qua vòng xét hồ sơ sẽ phỏng vấn theo lịch như sau:– Phỏng vấn trực tiếp: Ngày 23/02/2014 (Tại PTN TBG)– Thông báo kết quả: ngày 26/02/2013 (Tại website PTN và điện thoại)STT HỌ TÊN THỜI GIAN 1 Lê Minh Phong 14:00 2 Trịnh Vạn Ngữ 14:20 3 Nông Đăng Quang 14:40 4 Trương Châu Nhật 15:00 5 Nguyễn Thị Hoàng Oanh 15:20 6 Trương Thị Bích Chi 15:40 Mọi thắc mắc xin liên hệ Thầy Phan Lữ Chính Nhân: 0912804550 hoặc Cô Huỳnh Thúy Oanh: 0909088064. -
Tuyển chọn HVCH, NCS tham gia nghiên cứu khoa học tại PTN
THÔNG BÁO
Thực hiện kế hoạch nghiên cứu và đào tạo của PTN Nghiên cứu và Ứng dụng Tế bào gốc năm 2014, Lãnh đạo PTN Nghiên cứu và Ứng dụng Tế bào gốc, Trường Đại học KHTN-ĐHQG-HCM tổ chức tuyển chọn HVCH, NCS tham gia vào các đề tài, dự án do PTN chủ trì từ năm 2014 theo kế hoạch như sau:
1. Đối tượng tuyển chọn
Học viên cao học, Nghiên cứu sinh thuộc tất cả các trường đại học, cơ sở nghiên cứu khoa học trong cả nước và ngoài nước thuộc các chuyên ngành:
+ Sinh học thực nghiệm – hướng sinh lý động vật
+ Di truyền học
+ Hoặc các ngành liên quan khác
2. Điều kiện tuyển chọn
– Học viên/ Nghiên cứu sinh tham gia tuyển dụng phải nộp Bộ hồ sơ xét tuyển và phỏng vấn trực tiếp với Lãnh đạo PTN và trưởng các nhóm nghiên cứu liên quan
– Riêng các nghiên cứu sinh cần trao đổi về đề cương nghiên cứu sinh trước khi phỏng vấn hay thi đầu vào nghiên cứu sinh.
– Đảm bảo thời gian học tập và nghiên cứu tại PTN sau khi khi trúng tuyển:
+ Đối với Thạc sĩ: tối thiểu 12 tháng
+ Đối với Tiến sĩ: tối thiểu 3 năm
3. Quyền lợi
– Được tạo điều kiện học tập, tiến hành các nghiên cứu, thực hiện luận án Thạc sĩ, Tiến sĩ.
– Được PTN chi trả chi phí nghiên cứu bao gồm toàn bộ kinh phí hoá chất, vật tư, cơ sở vật chất thiết bị cho tiến hành nghiên cứu.
4. Hồ sơ ứng tuyển
PTN chỉ nhận hồ sơ trực tuyến, do đó TẤT CẢ CÁC ỨNG VIÊN PHẢI ĐĂNG KÍ NỘP HỒ SƠ TRỰC TUYẾN ở mục “Hồ sơ ứng tuyển” tại website của PTN: www.vinastemcelllab.com, sau khi đăng nhập, ứng viên tạo tài khoản, điền đầy đủ thông tin lý lịch khoa học và đăng kí ứng tuyển.
Hồ sơ ứng tuyển gồm có:
– Đơn xin tham gia học tập và nghiên cứu trong PTN
– Lý lịch cá nhân có xác nhận của địa phương
– Giấy khám sức khoẻ
– Bản sao Bằng tốt nghiệp cử nhân và bảng điểm (đối với HVCH), bản sao Bằng tốt nghiệp Thạc sĩ (đối với NCS).
– Ý tưởng nghiên cứu khoa học (trình bày trên giấy A4, tối đa 05 trang, Time New Roman, Cỡ chữ 12, khoảng cách 1,5) theo hướng nghiên cứu mà ứng viên chọn trong Mục 6.
5. Thời gian xét tuyển
– Nộp hồ sơ xét tuyển từ ngày 20/02/2014 đến 16h00 ngày 20/03/2014
– Phỏng vấn trực tiếp: ngày 10/04/2014 (dự kiến)
– Thông báo kết quả: ngày 15/04/2014 (dự kiến)
– Tham gia vào phòng thí nghiệm: ngày 20/04/2014 (dự kiến)
6. Số lượng HVCH, NCS và các hướng nghiên cứu
– Nghiên cứu tái thiết lập chương trình trực tiếp nguyên bào sợi thành tế bào mạch máu. Số lượng: 01 NCS; 02 HVCH
– Nghiên cứu chế tạo khớp háng toàn phần nhân tạo phục vụ cho thay khớp toàn phần. Số lượng: 02 HVCH
– Nghiên cứu hoàn thiện quy trình công nghệ điều trị lâm sàng ung thư vú bằng tế bào tua. Số lượng: 01 HVCH; 01 NCS (Ưu tiên tuyển bác sĩ)
– Nghiên cứu điều trị bệnh đái tháo đường bằng ghép tế bào gốc. Số lượng: 03 HVCH; 01 NCS (Ưu tiên tuyển 1 bác sĩ)
– Nghiên cứu tính kháng đa thuốc trong ung thư gan, ung thư vú; ung thư đại trực tràng. Số lượng: 03 HVCH, 01 NCS
– Nghiên cứu điều trị thực nghiệm bệnh hoại tử xương và xương thuỷ tinh bằng ghép tế bào gốc. Số lượng: 01 HVCH
7. Quy trình tuyển chọn
– Sơ tuyển: tuyển chọn qua hồ sơ: sau khi nhận hồ sơ Lãnh đạo PTN sẽ chọn những ứng viên đủ điều kiện tuyển chọn
– Phỏng vấn: chỉ những ứng viên trúng tuyển trong đợt sơ tuyển được mời đến phỏng vấn (mời qua email và điện thoại)
– Thông báo trúng tuyển và tham gia vào PTN: ứng viên được thông báo trúng tuyển sau khi phỏng vấn 1-3 ngày bằng điện thoại và tham gia vào PTN sau 3-10 ngày kể từ ngày thông báo trúng tuyển
8. Liên hệ
Mọi thắc mắc vui lòng liên hệ Thầy Phan Lữ Chính Nhân (plcnhan@hcmus.edu.vn) và Cô Huỳnh Thúy Oanh (htoanh@hcmus.edu.vn), tại Phòng thí nghiệm Tế bào gốc trường ĐH KHTN, cơ sở 227 Nguyễn Văn Cừ, P.4, Q.5, Tp.HCM.
TM. Lãnh đạo PTN
Phó trưởng PTN Tế bào gốc
Phạm Văn Phúc
-
Lịch công tác tuần 17/02-22/02
Lịch công tác tuần 17/02-22/02
Ngày
Giờ
Nội dung
Địa điểm
Thành phần
Thứ 2
17/02
8h-11h
Họp giao ban lab
Open lab
Toàn thể thành viên PTN
Thứ 3
18/02
9h-10h
Họp nhóm Mạch máu
Thư viện
Nhóm mạch máu
14h-16h
Họp nhóm Thần kinh
Thư viện
Nhóm thần kinh
Thứ 4
19/02
10h-11h
Họp nhóm tiểu đường
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, nhóm tiểu đường 1,
14h-16h
Họp triển khai Symposium
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, nhóm sự kiện
16h-17h
Họp nhóm Gan
Thư viện
Nhóm Gan
Thứ 5
20/02
8h-9h
Họp nhóm Thần kinh
Thư viện
Nhóm Thần kinh
14h-15h30
Họp chuẩn bị GIC 2015
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, nhóm sự kiện
14h-16h
Họp nhóm mAb
Thư viện
Nhóm mAb
16h-17h
Họp nhóm UTV
Phòng lãnh đạo
P.V.Phúc, C.Nhân, T.Bình, T.Hạnh
Thứ 6
21/02
Thứ 7
22/02
-
Symptomatic knee osteoarthritis treatment using autologous adipose derived stem cells and platelet-r
Symptomatic knee osteoarthritis treatment using autologous adipose derived stem cells and platelet-rich plasma: a clinical study
Abstract
Osteoarthritis is one of the most common diseases, and it affects 12% of the population around the world. Although the disease is chronic, it significantly reduces the patient’s quality of life. At present, stem cell therapy is considered to be an efficient approach for treating this condition. Mesenchymal stem cells (MSCs) show the most potential for stem cell therapy of osteoarthritis. In fact, MSCs can differentiate into certain mesodermal tissues such as cartilage and bone. Therefore, in the present study, we applied adipose tissue-derived MSCs to osteoarthritis treatment. This study aimed to evaluate the clinical efficiency of autologous adipose tissue-derived MSC transplantation in patients with confirmed osteoarthritis at grade II and III. Adipose tissue was isolated from the belly, and used for extraction of the stromal vascular fraction (SVF). The SVF was mixed with activated platelet-rich plasma before injection. The clinical efficiencies were evaluated by the pain score (VAS), Lysholm score, and MRI findings. We performed the procedure in 21 cases from 2012 to 2013. All 21 patients showed improved joint function after 8.5 months. The pain score decreased from 7.6±0.5 before injection to 3.5±0.7 at 3 months and 1.5±0.5 at 6 months after injection. The Lysholm score increased from 61±11 before injection to 82±8.1 after injection. Significant improvements were noted in MRI findings, with increased thickness of the cartilage layer. Moreover, there were no side-effects or complications related to microorganism infection, graft rejection, or tumorigenesis. These results provide a new opportunity for osteoarthritis treatment. Level of evidence: IV.Keywords
Osteoarthritis; Adipose tissue-derived stem cell; Stromal vascular fraction; Platelet-rich plasma -
A comparison of umbilical cord blood-derived endothelial progenitor cell transplantation and mononuc
A comparison of umbilical cord blood-derived endothelial progenitor cell transplantation and mononuclear cell transplantation for the treatment of acute hindlimb ischemia in a murine model
Abstract
Introduction: Acute lower limb ischemia is a common peripheral artery disease whose treatment presents many difficulties. Stem cell transplantation is considered a novel and promising method of treating this disease. Umbilical cord blood (UCB) is rich in stem cells, including hematopoietic stem cells (HSCs), mesenchymal stem cells (MSCs) and endothelial progenitor cells (EPCs). However, historically, banked umbilical cord blood has been used mainly to treat blood-related diseases. Therefore, this study compared the efficacy of umbilical cord blood-derived mononuclear cells (UCB-MNCs) with EPC transplantation for the treatment of acute hindlimb ischemia (ALI) in mouse models.
Methods: MNCs were isolated from UCB by Ficoll gradient centrifugation, after which the EPCs were sorted based on CD34+ and CD133+ markers and cultured according to a previously published protocol. To induce ALI, mice were immuno-suppressed using busulfan (BU) and cyclophosphamide (CY), after which the femoral arteries were burned. Induction of ALI in the immune suppressed mice was confirmed by the grade of tissue damage, pedal frequency in water, tissue edema, changes in histology, total white blood cell count, and white blood cell composition. Model mice were injected with a dose of MNCs or EPCs and un-treated control mice were injected with phosphate buffered saline. The efficiency of treatment was evaluated by comparing the grade of tissue damage between the three groups of mice.
Results: Mice aged 6–12 months were suitable for ALI, with 100% of mice exhibiting ischemia from grade I 10%, grade III 50%, grade IV 40%. For all ALI mice, a gradual increase in pedal frequency in water, increased tissue edema, necrosis of muscle tissue, and (Andaz, 1993 #6)loss of hindlimb function were observed after 20 days. Transplanted MNCs and EPCs significantly improved hindlimb ischemia compared with control treatment. Moreover, EPC transplantation significantly improved hindlimb ischemia compared with MNC transplantation. Following EPC and MNC transplantation, 44.44% and 33.33% of the mice recovered fully (grade 0), respectively. Specifically, all recovered mice exhibited hindlimb activities similar to those of normal mice
Keywords
Hindlimb ischemia, Umbilical cord blood-derived stem cells, Mononuclear cells, Endothelial progenitor cells, Neovascularization.